本試劑盒適合于從血清、細胞上清、淋巴液中提取DNA病毒基因組，不適合于RNA病毒基因組的提取。使用本試劑盒提取的基因組DNA可用于各種常規操作，包括酶切、PCR、文庫構建、Southern雜交等實驗。

操作步驟：

    使用前請先在漂洗液中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。所有離心步驟均為使用臺式離心機在室溫下離心。

1、  取病毒上清液0.5ml，12000rpm離心5min，盡量吸盡上清使用，棄去沉淀。

2、  向病毒上清中加入20ul的蛋白酶K（10mg/ml），充分混勻，65℃消化10-20min，期間可顛倒離心管混勻數次。

3、  向管中加入500ul結合液，充分混勻。再向管中加入400ul無水乙醇，充分混勻，此時可能會出現絮狀沉淀，不影響DNA的提取，可將溶液和絮狀沉淀都加入吸附柱中，靜置2min。（吸附柱的最大容積為750ul，可分兩次加入。一次吸附完離心后再將余下的混合液體加入柱中靜置離心。）

4、  12000rpm離心2min，棄廢液，將吸附柱放入收集管中。

5、  向吸附柱中加入600ul漂洗液(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇)，12000rpm離心1min，棄廢液，將吸附柱放入收集管中。

6、  向吸附柱中加入600ul漂洗液，12000rpm離心1min，棄廢液，將吸附柱放入收集管中。

7、  12000rpm離心2min，將吸附柱置于室溫或50℃溫箱放置數分鐘，目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，     否則漂洗液中的乙醇會影響后續的實驗如酶切、PCR等。

8、將吸附柱放入一個干凈的離心管中，向吸附膜中央懸空滴加50ul-100ul經65℃水浴預熱的洗脫液，室溫放置5min，12000rpm離心1min。

9、離心所得洗脫液再加入吸附柱中，室溫放置2min，12000rpm離心2min，即可得到高質量的病毒基因組DNA。

注意事項:

1、蛋白酶K需放置-20℃保存。

2、樣品應避免反復凍融，否則會導致提取的DNA片段較小且提取量也下降。

3、若結合液中有沉淀，可在37℃水浴中重新溶解再使用，不影響效果。

4、洗脫緩沖液的體積最好不少于50ul，體積過小會影響回收效率。洗脫液的pH值對洗脫效率也有影響，若需要用水做洗脫液應保證其pH值在8.0左右(可用NaOH將水的pH值調至此范圍)，pH 值低于7.0會降低洗脫效率。DNA產物應保存在-20℃，以防DNA降解。

5、DNA濃度及純度檢測：得到的基因組DNA片段的大小與病毒的保存條件和種類等因素有關。D260值為1.0相當于大約50 ug/ml雙鏈DNA、40 ug/ml單鏈DNA。OD260/OD280比值應為1.7-1.9，如果洗脫時不使用洗脫緩沖液，而使用去離子水，比值會偏低，因為pH值和離子存在會影響光吸收值，但并不表示純度低。

6、如果病毒含量過低，最后提取的基因組DNA電泳可能無法檢測到，但PCR等其他實驗還會有結果。